انجماد شاخه ای از علم اکرایوبیولوژی است که به منظور حفظ و نگهداری طولانی مدت سلول در شرایط حرارت بسیار پایین صورت می گیرد. انجماد اسپرم به طور معمول در مراکز باروری و آزمایشگاه های آندرولوژی انجام می شود. با توجه به اینکه روند انجماد، سبب کاهش عملکرد و ظرفیت باروری اسپرم ها می گردد، چند سالی است که ارزیابی روش ها و محیط های مختلف انجماد جهت بررسی تاثیر آنها در تحریک اسپرم انجام گرفته است. با وجود این هرگز بهترین محیط جهت انجماد اسپرم شناخته نشده و هیچ روش استاندارد انجماد اسپرم بنا نشده است. لذا بنا کردن تکنیک مناسب انجماد و نیز استفاده از محیط مناسب انجماد بر اساس یافته های تجربی بسیار ضروری به نظر می رسد. بنابراین، هدف اصلی این مطالعه بررسی میزان بقا و تحرک اسپرم طی روند انجماد به کمک سه محیط مختلف انجماد شامل (Yolk-Buffer) TYB-G Test- , HSPM (Human Sperm Preservation Medium) و (GEYC) Glycerol Egg Yolk Citrate با دو روش مختلف انجماد شامل روش دستگاهی (برنامه ریزی شده) و روش غیردستگاهی (استفاده از فاز بخار ازت مایع) است.

لطفا برای مشاهده چکیده به متن کامل (PDF) مراجعه فرمایید.

امروزه حفظ محیط زیست به عنوان یکی از مهمترین ارکان توسعه پایدار قلمداد شده و توسعه سایر بخش های اقتصادی و اجتماعی در گرو پایداری و کارکرد صحیح آن معنا و مفهوم پیدا می کند، از این رو حوزه معدن نیز با توجه به ضایعات و پسماند های گسترده ای که در محیط زیست از خود جای می گذارد، مورد توجه قرار گرفته است. با پیشرفت بشر روش های متعددی جهت بازیافت و نگهداری باطله های معدنی پیشنهاد گردیده است. تبدیل باطله ها به سنگ مصنوعی را می توان روشی اقتصادی و مناسب جهت مدیریت پسماند های معدنی دانست. سنگ مصنوعی ترکیبی از پسماند های معدنی، مواد پرکننده، رنگ ها و یک ماده چسباننده مانند رزین های پلیمری و یا سیمانی است. فرآیند تولید سنگ مصنوعی از پسماند ها و ضایعات شامل دو روش پایه سیمانی و پایه رزینی می باشد. به منظور بررسی کیفیت سنگ ها آزمایش های مکانیک سنگ بر روی نمونه هایی با هندسه استاندارد تحت شرایط بارگذاری دقیق و مشخص انجام می شود که هدف از انجام این آزمایش ها تعیین و تعریف مقاومت نهایی، کیفیت جذب آب و درصد تخلخل سنگ مصنوعی در پاسخ نمونه آزمایشی تحت این شرایط کنترل شده می باشد. در آزمایش های مبتنی بر خواص مکانیکی سنگ در درجه اول موارد مورد نظر مقاومت فشاری، مقاومت خمشی، ازمون جذب آب و آزمون تخلخل می باشند. این داده ها به طور معمول جهت مقایسه نمونه های دارای پسماند و ضایعات معدنی با دیگر سنگ ها و معیار های استاندارد سنگ مصنوعی استفاده می شوند. نتیجه تحقیقات بروی نمونه های مختلفی که تحت روش های گوناگون تولید شده اند، مقاومت فشاری سنگ طبیعی 52 مگاپاسکال را نشان داد، در حالی که مقاومت فشاری سنگ مصنوعی بیشتر بود، برای نمونه در تحقیقی میانگین مقاومت فشاری. 49/ 96مگاپاسکال ثبت شده، بیانگر مقاومت قابل قبول نمونه های سنگ مصنوعی می باشد. همچنین با بررسی تخلخل و جذب آب سنگ های مصنوعی، نتایج بیان داشت، نمونه ها از جذب آب و درصد تخلخل پایین تری نسبت به سنگ طبیعی برخوردار می باشند و می توانند به عنوان جایگزین مناسبی برای سنگ های طبیعی تلقی گردند، ایضاً با بهره گیری از این روش ضمن حفظ محیط زیست می توان از پسماند ها و ضایعات معدنی مجدداً استفاده کرد و به محصولی کاربردی در صنعت ساختمان تبدیل نمود.

با توجه به اهمیت استفاده از پتانسیل جمعیت های بومی قارچ های کلاهک دار در تحقیقات زیست-پزشکی، برنامه های اصلاحی، مطالعات تنوع زیستی و بررسی های ژنی، وجود مراکزی در کشور که نمونه های قارچ های بومی را به صورت زنده در شرایط استاندارد جهت حفظ خصوصیات اصلی نگهداری کنند، بسیار ضروری است. لذا این طرح با هدف جمع آوری نمونه های زنده قارچ های کلاهک دار از استان مازندران (که غنی از ذخایر ارزشمند قارچ های بومی است) با تمرکز بر قارچ های دارویی مهم انجام شد. نمونه برداری ها در بازه زمانی 1396-1394 از مناطق مختلف مازندران در طی 4 دوره زمانی متفاوت در فصل های مختلف و هر منطقه 2 بار انجام شد. اطلاعات مربوط به هر جدایه شامل شناسایی اولیه، مشخصات جغرافیایی، تغییرات رنگ و بو، نوع حلقه و اطلاعاتی درباره ی نحوه ی رشد (منفرد یا گروهی) و اطلاعات رویشگاه (خاک و گیاهان)، تغییر رنگ بافت قارچ با ایجاد خراش یا برش، ساختار حلقه، بو یا عطر و واکنش شافر ثبت شده و چندین تصویر از قسمت های مختلف هر نمونه گرفته شد. سپس در محل نمونه برداری، کشت بافت اولیه اندام باردهی روی حداقل دو نوع محیط کشت صرفا با هدف تولید میسلیوم زنده در کمترین زمان ممکن برای انتقال به آزمایشگاه مجهز تر انجام گرفت. همچنین خشک کردن نمونه ها و گرفتن نقش اسپور به منظور کاربرد در شناسایی بر اساس ریخت شناسی (بر پایه مشاهدات میکروسکوپی و ماکروسکوپی) انجام گردید. مجموعا 198 نمونه قارچ کلاهک دار از جنس های مختلف جمع آوری شد که از این تعداد 91 نمونه به صورت موفقیت آمیزی تولید میسلیوم زنده در محیط کشت نمودند و سایر جدایه ها از بین رفتند. بر اساس اطلاعات مورفولوژیکی بدست آمده در مراحل قبلی، تعداد 62 جدایه تایید شدند. از این میان، 52 عدد از طریق ابزار آنالیز توالی ITS تعیین جنس یا گونه شدند که پس از بررسی نتایج، مشخص شد که 9 جدایه آسکومایست و 43 جدایه بازیدیومایست بودند. 57 جدایه نیز برای زراعی سازی (اهلی سازی) استفاده شد. مراحل زراعی سازی شامل خالص سازی در محیط کشت جامد (با استفاده از 4 نوع محیط کشت PDA, CEA, MGA, YPG)، تولید اسپاون در دانه گندم یا خاک اره، تولید کشت تعلیقی میسلیوم (در یک نوع محیط کشت MGA برای تولید بیوماس میسلیومی) و بررسی امکان تولید اندام زایشی قارچ در بستر کشت (یک نوع بستر کشت مبتنی بر تراشه چوب) بودند. همچنین شاخص هایی همچون نوع بافت میسلیوم (رشته ای، پنبه ای، کرکی یا بدون میسلیوم هوایی)، سرعت رشد شعاعی، تراکم، رنگ و شکل هندسی میسلیوم مورد بررسی قرار گرفته و داده ها از نظر آماری با یکدیگر مقایسه شدند. نتایج حاکی از تفاوت معنی دار در بین جدایه ها و در بین محیط های کشت از نظر شاخص های فوق بود. در بین محیط کشت های مورد استفاده، دو محیط کشت PDA و MGA بهترین شرایط رشدی برای رشد میسیلیوم جدایه های قارچ بومی مورد مطالعه را داشتند (p ≤ 0. 05). آزمون میوه دهی نشان داد که جدایه های مربوط به 7 جنس مختلف بازیدیومایستی موفق به تولید اندام باردهی در بستر کشت شدند، شامل: Donkia pulcherrima, Lenzites tricolor, Ganoderma tsugea, Cyclocybe sp. Pholiota aurivella, Trametes sp و Daedaleopsis tricolor. تمامی 62 جدایه تایید شده در این پژوهش به صورت کشت خالص میسلیومی و قابل تکثیر نگهداری می شود تا در تحقیقات بعدی در صورت نیاز مورد استفاده قرار گیرد. همچنین بررسی منابع نشان داد که 7 جدایه ای که در این تحقیق زراعی سازی شدند دارای خواص ضد میکروبی و ضد سرطانی بوده و در تحقیقات زیست-پزشکی اهمیت فراوانی دارند. لذا موفقیت در زراعی سازی این جدایه ها در بستر کشت مصنوعی ابزار تحقیقاتی مورد نیاز برای بررسی اثرات بیولوژیکی آنها را فراهم می کند.

پروتئین پرومیلوسیتیک لوکمیا (Promyelocytic Leukemia) یکی از مهمترین پروتئین هایی است که در PML-نوکلئار بادی ها(PML-Nuclear Bodies: PML-NBs) دیده می شود. رتینوئیک اسید فعالیت مهار رشد تومور و تمایز میلوئیدی سلول های پیش ساز مونوسیت-گرانولوسیت را از طریق PML-نوکلئار بادی ها اعمال می کند. از طرف دیگر رتینوئیک اسید (Retinoic Acid: RA) به عنوان یک مورفوژن طبیعی طی تکوین جنین در تنظیم الگوی خلفی طناب عصبی نقش دارد. این مطالعه به منظور بررسی نقش PML در تمایز نورونی وابسته به RA سلول های بنیادی انجام شد. به این منظور تمایز عصبی سلول های بنیادی جنین موشی، انسانی و سلول های بنیادی تراتوکارسینومائی NT2 در محیط آزمایشگاهی با تیمار این سلول ها با RA به عنوان القاگر انجام شد. بررسی بیان PML در سطح mRNA نشان داد که PML بیشترین بیان را در سلولهای بنیادی جنینی انسانی و موشی دارد. بیان این ژن طی تمایز نورونی در سلول های پیش ساز نورونی و سلول های نورونی بالغ کاهش می یابد. در حالی که در سلول های NT2 این ژن بیشترین بیان را در مرحله پیش ساز نورون نشان داد. در سطح پروتئین نیز بیان این ژن به صورت سه پروتئین با وزن مولکولی 170، 130 و 70 کیلو دالتون در سلول های بنیادی جنین موشی، سلول های پیش ساز مشتق از این سلول ها و سلول های نورونی حاصل از تیمار RA مشاهده شد. در ایمنوبلات مربوط به مراحل مختلف تمایز نورونی سلول های بنیادی جنینی انسانی و سلول های بنیادی تراتوکارسینومائی پروتئین های مختلف با مقادیر متفاوت دیده شد. علاوه بر این اختلاف بیان در مراحل مختلف و سلول های بنیادی مختلف، الگوی متیلاسیون هر CpG سایت و هم چنین درصد متیلاسیون CpGها در پروموتور این ژن در سلول های NT2 و سلول های پیش ساز حاصل از آن ها تفاوت داشت. این نتایج نشان داد که احتمالا PML نقش مهمی در حفظ پرتوانی سلول های بنیادی، پتانسیل تکثیر و تمایز عصبی این سلول ها دارد.

توده ای شدن پروتئین که ممکن است در اثر موتاسیون و یا تغییرات شیمیایی یا فیزیکی محیط سلولی بوجود آید، منشاء بیش ازبیست نوع بیماری نظیر آلزایمر، پارکینسون، هونتینگتون، کاتاراکت و نظائر آنها می باشد. جلوگیری ویا حتی مهار جزئی توده ای شدن هنوز در مراحل آزمایشگاهی است. در این پایان نامه استخراج، تخلیص، نافسفوریله کردن کازئین α S1 حاصل از شیر شتر وشیر گاو گونه ایرانی، بررسی وجود فعالیت چپرونی آنها در جهت پایدارسازی وجلوگیری از توده ای شدن انسولین و کاتالاز، اثر پارامترهای مختلف نظیر گروه های فسفات، نمکها وغلظتهای مختلف سدیم دو دوسیل سولفات بر ساختار و فعالیت چپرونی کازئین α S1 برای اولین بار مورد مطالعه و بررسی قرار گرفته است. پایداری گرمایی کازئین α S1 نا فسفوریله و فسفوریله شیر شتر بیشتر از کازئین α S1 نا فسفوریله و فسفوریله شیر گاو می باشد. کازئین α S1 شیر شتر وشیر گاو در حالت فسفوریله از طریق بر همکنش هیدروفوب با بخش هیدرو فوب پروتئین هدف سبب کاهش بر هم کنش هیدروفوب بین مولکولهای انسولین-انسولین و یا کاتالاز-کاتالاز شده ودر نهایت سبب کاهش توده ای شدن آنها می شوند. نافسفوریله شدن کازئین α S1 شیر شتر وشیر گاو توانائی آنها را در جلوگیری از توده ای شدن کاهش می دهد، ولی این توانایی را از بین نمی برد. نتایج ما حاکی از نقش نواحی هیدروفوب کازئین در قابلیت چپرونی آن است. با افزودن غلظت هر دو کازئین α S1 حاصل از شیر شتر و گاو قابلیت چپرونی آنها افزایش می یابد. غلظت های مختلف Τ Τ D سبب تغییرات ساختاری هر دو کازئین α S1 می شود. افزایش قدرت یونی سبب افزایش در معرض قرار گیری بخش های هیدروفوب پروتئین می شود. این موضوع می تواند منجر به افزایش بر همکنش هیدروفوبیک بین مولکولی گردد. لذا افزایش قدرت یونی به توده ای شدن هم چپرون و هم پروتئین هدف مساعدت می کند. افزودن NaCl KCl و NaNO3 به مخلوط واکنش سبب تشدید توده ای شدن پروتئین های هدف می شود. افزودن نمکها به همراه کازئین α S1 بطور کامل توانائی آنها را در جلوگیری از توده ای شدن پروتئین های هدف از بین می برد. بر اثر خاصیت هیدریشن نمک فضای اطراف پروتئین دی هیدره میشود. مقدار دی هیدریشن پروتئین بر طبق سریهای هاف مایستر به نوع نمک بستگی داشته ولذا نمکهای مختلف به طور متفاوت از یکدیگر سبب تغییر آرایش فضائی یکی ویا هر دو پروتئین میشوند. در نتیجه این تغییرات آرایش فضائی، مقدار توده ای شدن پروتئین های هدف در حضور نمکهای مختلف متفاوت بوده و در حضور کازئین توده ای شدن آن بیشتر می شود. بر اساس نتایج حاصله در این تحقیق SDS اثر دو گانه بر روی توده ای شدن انسولین دارد. در غلظتهای بالای 10 میکرو مولار از توده ای شدن انسولین جلوگیری و نقش افزاینده فعالیت چپرونی کازئینα S1 را ایفا می کند، درحالیکه در غلظتهای پائینتر از یک میکرو مولار سبب توده ای شدن بیشتر انسولین شده و نقش کاهنده فعالیت چپرونی کازئین α S1 را ایفا می کند. در غلظتهای بالای SDS بر طبق قانون کولن دافعه الکترواستاتیکی بین کازئین α S1 و سرهای باردار SDS بیشتر از نیروی دافعه میان انسولین و سرهای باردار SDS است. بنابراین رانده شدن مولکولهای SDS از طرف کازئین α S1 سبب بیشتر شدن واکنشهای هیدرو فوب میان دم هیدروفوب SDS و انسولین میشود ولذا ازتوده ای شدن انسولین جلوگیری میکند. ولی در غلظتهای کم نیروی دافعه میان انسولین و سرهای باردار SDS مانع از نزدیک شدن دمهای هیدروفوب می شود و لذا بر همکنش هیدروفوب انسولین-انسولین سبب اافزایش توده ای شدن انسولین میشود.

توده نفوذی قمصر و قهرود به سن الیگومیوسن در شمال اصفهان و از نظر ساختاری در کمربند آتشفشانی ارومیه-دختر قرار گرفته است. ترکیب این نفوذی از دیوریت تا تونالیت در نوسان بوده و کانی های عمده آن شامل پلاژیوکلاز، کوارتز و آلکالی فلدسپار به همراه بیوتیت و آمفیبول می باشند. دایک های تاخیری متعدد با ترکیب بازالتی تا داسیتی این توده را قطع نموده اند. بر اساس مطالعات زمین شیمیایی، سنگ های این توده در محدوده ساب آلکالن، کالک آلکالن و متاآلومین قرار گرفته اند. انطباق کامل ترکیبی توده نفوذی و دایک های تاخیری در نمودارهای مختلف زمین شیمیایی و نمودارهای تشخیصی تکتونوماگمایی، بیانگر این است که ممکن است سنگ های نیمه عمیق و توده نفوذی منطقه، منشأ مشترکی داشته باشند. حضور گسترده انکلاوهای میکروگرانولار، بافت غربالی و منطقه بندی پلاژیوکلازها می تواند از شواهد اختلاط ماگمایی در این سنگ ها باشد. غنی شدگی از LILE و Pb شواهدی از آلایش پوسته ای هستند. با توجه به آنومالی منفی بارز Nb و Ti ماگمای سازنده توده مورد نظر در یک محیط قوس آتشفشانی واقع در حاشیه فعال قاره ای تشکیل شده است. شواهد زمین شیمی عناصر نادر خاکی و کمیاب، نشان می دهند که ماگمای سازنده سنگ های این توده احتمالاً در اثر ذوب بخشی پروتولیت های پوسته زیرین (آمفیبولیت) به وجود آمده است. ماگمای بازالتی حاصل از ذوب گوشته که در پوسته زیرین جایگزین شده اند. منبع حرارتی برای ذوب سنگ های پوستهای بوده و اختلاط بین این ماگما و ماگمای حاصل از ذوب بخشی، ماگمای حدواسط سنگ های نفوذی قهرود را ایجاد نموده اند. تبلور تفریقی این مذاب در سطوح بالاتر پوسته، سبب افزایش مقادیر K2O و Na2O و کاهش MgO، MnO، Al2O3، CaO، TiO2و Fe2O3 در طی بالاآمدگی ماگما و تشکیل انواع سنگ های توده نفوذی قمصر-قهرود شده است. بخش هایی از سنگ های توده نفوذی قمصر-قهرود در اثر نفوذ دایک های داسیتی-بازالتی متحمل دگرسانی های عمدتا سریسیتی و پروپیلیتیک شده اند که با مطالعات سنجش از دور این مناطق شناسایی گردید. مطالعات زیست محیطی که بر روی زون های دگرسانی این منطقه انجام گردید حاکی از آن است که نمونه های خاک منطقه از عناصر مس، مولیبدن، سرب و روی غنی شده اند. نتایج نشان داد که انواع مختلف دگرسانی و نزدیکی به توده های آذرین عامل اصلی افزایش تمرکز فلزات سنگین در منطقه بوده است.

در این پایان نامه تأثیر تابش امواج الکترومغناطیسی با فرکانس تلفن همراه (940 مگاهرتز) بر هموگلوبین انسانی بزرگ سال (HbA) و نوزاد (HbF) مورد بررسی قرار گرفت. میزان اکسیژن جذب شده توسط HbA اشعه خورده در این فرکانس و شدت V/m 80 به مدت 40 دقیقه افزایش و میزان اکسیژن جذب شده توسط HbF اشعه خورده در همان شرایط کاهش یافت. مطالعات far– UV CD نشان داد که ساختار دوم HbA و HbF تغییر قابل ملاحظه ای نداشته است و HbA کمی فشرده تر و HbF بازتر شده است. عمده تغییر مربوط به ساختار سوم پروتئین تحت تأثیر امواج بود. مطالعات ساختاری HbA و HbF اشعه خورده با طیف سنجی فلورسانس ذاتی و هم چنین بررسی فلورسانس ANS اتصال یافته به پروتئین نشان داد که بنای فضایی پروتئین تغییر یافته است. مطالعات پایداری حرارتی HbA و HbF تحت تابش میدان الکترومغناطیسی با فرکانس MHz 940 و شدت V/m 80 نشان داد که مجاورت با میدان موجب پایداری حرارتی HbA و ناپایدارتر شدن ساختار HbF شد. مطالعه توده ای شدن HbA و HbF اشعه خورده با استفاده از روش جذب UV-Vis نشان داد که HbA کم تر توده ای شده و HbF بیش تر توده ای شده است. مطالعات فلورسانسHbF اشعه خورده نشان داد بر خلاف HbA، اثر امواج پس از 168 ساعت برگشت ناپذیر بود. در انتها پس از مقایسه رفتار الکتروشیمی مستقیم HbA وHbF، نتایج به دست آمده از ولتاموگرام های چرخه ای هموگلوبین های اشعه خورده تثبیت شده بر روی الکترود بهبود یافته با نانوکامپوزیت نانو لوله کربنی و مایع یونی، مؤید نتایج طیف سنجی بود. با به کارگیری همین اصلاح بر روی الکترود چاپی، رفتار الکتروشیمی هموگلوبین ها هم زمان با اعمال میدان مورد بررسی قرار گرفت.

سلول های بنیادی جنینی، سلول هایی هستند که علاوه بر خودنوزایی نامحدود، قادرند به همه رده های زایا (مشتقات اکتودرم، مزودرم و آندودرم) تمایز پیدا کنند. بخاطر این دو ویژگی کلیدی، سلول های بنیادی جنینی کاربردهای فراوانی در مطالعه تکوین جنین، تولید سلول های موردنظر برای سلول درمانی، غربال گری داروها و مدل سازی بیماری ها دارند. خودنوزایی و پتانسیل تمایزی هنگفت سلول های بنیادی جنینی، توسط شبکه ای سازمان یافته از مولکول ها شامل عوامل رونویسی و همچنین مولکول های RNA غیررمزگردان نظیر microRNAها ایجاد و حفظ می شوند. ما در این مطالعه نشان دادیم که microRNAها با الگوهای متفاوتی در سلول های بنیادی جنینی حالت پایه (ground state) و سلول های حالت سرم بیان می شوند. ما دریافتیم که لوکوس اثرگذاری شده Dlk1-Dio3 که اهمیت تکوینی بالایی دارد، بیشتر microRNAهای خاص حالت پایه را بیان می کند. آنالیز کامپیوتری پیش بینی کرد که microRNAهای حالت پایه مسیرهای متعدد تمایزی و تکوینی را هدف قرار می دهند. ارزیابی عملکردی microRNAهای کاندید حالت پایه (miR-541-5p، miR-410-3p و miR-381-3p) نشان داد که این microRNAها با پیشبرد خودنوزایی و مهار تمایز، به حفظ و تقویت حالت پایه پرتوانی کمک می کنند. همچنین آنالیز عملکردی microRNAهای فراوان در همه شرایط کشت (miR-148-3p و miR-30d-5p) نشان داد که این microRNAها ضمن پیشبرد خودنوزایی و تغییر در پتانسیل تمایزی سلول های بنیادی جنینی، قادرند بازده تولید سلول های بنیادی پرتوان القایی (iPS) را نیز افزایش دهند. همچنین ما با استفاده از small RNA sequencing، الگوی بیانی جامع microRNAها را در طی تولید رده های سلولی بنیادی جنینی در محیط R2i برای اولین بار تعیین کردیم. مشاهده شد که microRNAها با الگوهای متغیر و پویایی در طی تولید سلول های بنیادی جنینی بیان می شوند. روی هم رفته، ما توانستیم برای نخستین بار الگوی بیانی microRNAها را در سلول های بنیادی جنینی حالت پایه و همچنین در طی تولید سلول های بنیادی جنینی از جنین های بلاستوسیست در محیط پیشبرنده حالت پایه پرتوانی، مشخص کنیم و از لحاظ عملکردی نشان دهیم که microRNAها از طریق مهار تمایز و پیشبرد جنبه های مختلف خودنوزایی، باعث پیشبرد حالت پایه پرتوانی می شوند.

لطفا برای مشاهده چکیده به متن کامل (PDF) مراجعه فرمایید.